ПАТОМОРФОЛОГИЧЕСКАЯ ОЦЕНКА ЗАЩИТЫ ПЕЧЕНОЧНОГО ЭКСПЛАНТАТА ПРИ ДЛИТЕЛЬНОЙ ИШЕМИИ С ПОМОЩЬЮ КОМБИНИРОВАННОГО СПОСОБА КОНСЕРВАЦИИ В ЭКСПЕРИМЕНТЕ


Сохарев А.С., Краснов К.А., Будаев А.В., Плотникова Е.Ю., Шрайбер С.А.

Аннотация


Цель – оценить эффективность противоишемической защиты комбинированного раствора на основе НТК (гистидин-триптофан-кетоглутарат) и НЭПФОС (неоксигенированная эмульсия перфторорганических соединений) при консервации печеночного эксплантата.
Материалы и методы. Исследования проведены на 60 кроликах. Для гистологического исследования и морфометрии была выполнена биопсия печени кроликов до консервации и после 8 часов консервации в различных консервирующих растворах. Произведено 240 гистологических и морфометрических исследований.
Результаты. При 8-часовой консервации печеночных эксплантатов комбинированным раствором на основе НТК и НЭПФОС развивались менее выраженные ишемические изменения в тканевых структурах печени, чем при использовании моноконсервантов: стандартный НТК и контрольная НЭПФОС. Следовательно, комбинированный способ консервации уменьшает интенсивность ишемического повреждения печеночного эксплантата и, тем самым, повышает его жизнеспособность, что является необходимым условием для снижения риска развития возможных посттрансплантационных осложнений.
Выводы. Применение комбинированного способа консервации позволяет минимизировать патоморфологические изменения в тканях эксплантата и профилактировать ишемическое повреждение печени.


Ключевые слова


консервация печени; ишемическое повреждение печени; неоксигенированная эмульсия перфторорганических соединений

Полный текст:

Full Text HTML Full Text PDF

Литература


Jadlowiec CC, Taner T. Liver transplantation: Current status and challenges. World J Hepatol. 2016; 22(18): 4438-4445

Lee DD, Croome KP, Shalev JA et al. Early allograft dysfunction after liver transplantation: an intermediate outcome measure for targeted improvements. Annals of Hepatology. 2016; 15(1): 53-60

Qin1 J, Zhou1 J, Dai1 X et al. Short-term starvation attenuates liver ischemia-reperfusion injury (IRI) by sirt1-autophagy signaling in mice. Am J Transl Res. 2016; 8(8): 3364-3375

Boga S, Munoz-Abraham AS, Rodriguez-Davalos MI et al. Host factors are dominant in the development of post-liver transplant non-alcoholic steatohepatitis. World J Hepatol. 2016; 8(15): 659-664

Chu MJJ, Premkumar R, Hickey AJR et al. Steatotic livers are susceptible to normothermic ischemia-reperfusion injury from mitochondrial Complex-I dysfunction. World J Gastroenterol. 2016; 22(19): 4673-4684

Folch-Puy E, Panisello A, Oliva J et al. Relevance of endoplasmic reticulum stress cell signaling in liver cold ischemia reperfusion injury. Int. J. Mol. Sci. 2016; (17): 807-819

Nastos C, Kalimeris K, Papoutsidakis N et al. Global сonsequences of liver ischemia/reperfusion injury. Oxidative Medicine and Cellular Longevity. 2014; Article ID 906965: P.13

ÇakırI T, Aslaner IA, TekeliII SÖ et al. Grape seed protects cholestatic rats liver from ischemia/reperfusion injury. Acta Cirúrgica Brasileira. 2016; 31(3): 183-189

Hashimoto N. Protective effect of ischemic preconditioning on hepatic ischemia-reperfusion injury in rats. OA Lib J. 2015; (2): e1306

Jia JJ, Li JH, Jiang L. Liver protection strategies in liver transplantation. Hepatobiliary Pancreat Dis Int. 2015; 14(1): 34-42

Yamanaka K, Houben P, Bruns H et al. A systematic review of pharmacological treatment options used to reduce ischemia reperfusion injury in rat liver transplantation. PLoS ONE. 2015; 10(4): e0122214

Pérez JCJ, Ramírez АC, González LT et al. Spironolactone effect in hepatic ischemia/reperfusion injury in wistar rats. Oxidative Medicine and Cellular Longevity. 2016; Article ID 3196431: 9

Peng N, Ai Z, Wang Y et al. Injury mechanism in liver transplantation and its protective measures. JSM Biotechnol Bioeng. 2016; 3(2): 1054-1057

Theodoraki K, Karmaniolou I, Tympa A et al. Beyond preconditioning: postconditioning as an alternative technique in the prevention of liver ischemia-reperfusion injury. Oxidative Medicine and Cellular Longevity. 2016; Article ID 8235921: 21

Schoening W, Ariyakhagorn V, Schubert T et al. Warm HTK donor pretreatment reduces liver injury during static cold storage in experimental rat liver transplantation. Hepatobiliary Pancreat Dis Int. 2015; 14(2): 1-7

Melin C, Miick R, Young NA. Approach to intraoperative consultation for donor liver biopsies. Arch Pathol Lab Med. 2013; 137: 270-274

Shaimardanova C, Fedotovskikh G, Savchuk A. Pathologic criteria to stimate the state of the liver in potential donors. Experimental and Clinical Transplantation. 2015; (3): 33-35.

Naini BV, French SW. Liver Transplant Pathology In: WD Wallace, BV Naini (Eds.), Practical atlas of transplant pathology. Springer International Publishing Switzerland, 2016. P. 111-131.

Petrie A, Sabin K. Reference Medical Statistics. Textbook. 3rd ed., Rev. and ext. Moscow, 2015. 216 p. Russian (Петри А., Сэбин К. Наглядная медицинская статистика. Учеб. пособие. 3-е изд., перераб. и доп. М., 2015. 216 с).

Sukhorukov VP, Ragimov AA, Pushkin SY et al. Perftoran – perfluorocarbon blood substitute with gas transmission function: A guide for physicians. 2nd ed., Rev. and ext. Moscow, 2008. 79 p. Russian (Сухоруков В.П., Рагимов А.А., Пушкин С.Ю. и др. Перфторан – перфторуглеродный кровезаменитель с газотранспортной функцией: пособие для врачей. 2-е изд., перераб. и доп. М., 2008. 79 с.)


Статистика просмотров

Загрузка метрик ...

Ссылки

  • На текущий момент ссылки отсутствуют.